5 - nt souris 5 kits de détection ELISA nucléotidase

Les produits fournis par Notre société sont à usage scientifique uniquement, voici les propriétés du produit:
Nom complet du produit:5 - nt souris 5 kits de détection ELISA nucléotidase

Nom anglais: 5 - nt ELISA Kit

Numéro de l'article: bke6322
Spécifications: 48T / 96T

Service: un service de test gratuit est disponible, ainsi que des instructions de produit et des conseils techniques, etc.

Environnement de conservation: 2 - 8 ℃ basse température, à l'abri de la lumière, résistant à l'humidité

Ingrédients principaux: plaque de marquage enzymatique, réactifs, produits standard, etc.

Objectif du test: pour la détermination d'échantillons tels que le sérum, le plasma et les liquides associés. Par exemple, il convient de détecter des échantillons tels que le sérum, le plasma, l'urine, l'ascite thoracique, le liquide de lavage, le liquide céphalo - rachidien, le surnageant de culture cellulaire, les homogénats de tissus, etc. . nécessaire et non fourni.

Formulation des réactifs:

Plaque d'Assay: une pièce (96 ou 48 puits).

Standard: 2 bouteilles (lyophilisées).

Dilution de l'échantillon (Sample Diluent): 1 x 20 ml / flacon.

Dilution d'anticorps marqué (biotin - antibody diluent): 1 x 10 ml / flacon.

Dilution de peroxydase de raifort marquée à l'avidine (HRP - avidin diluent): 1 × 10 ml / flacon.

Anticorps marqué (biotin - antibody): 1 × 120 μl / flacon (1: 100)

7, avidine marquée à la peroxydase de raifort (HRP - avidin): 1 × 120 μl / flacon (1: 100)

Solution de substrat (TMB Substrate): 1 x 10 ml / flacon.

Liquide de lavage concentré (WASH buffer): 1 x 20 ml / flacon, dilué 25 fois avec de l'eau distillée lors de l'utilisation.

Solution Stop: 1 x 10 ml / flacon (H2SO4 2n).
Service après - vente:

Composition et formulation des réactifs:

1. Plaque de liaison enzymatique: un morceau (96 puits)
2.standard (lyophilisat): 2 bouteilles, chaque bouteille diluée dans la dilution de l'échantillon à 1 mL avant utilisation provisoire, laisser reposer plus de 10 minutes après le bouchon, puis inverser / frotter à plusieurs reprises pour aider à la dissolution, sa concentration est de 100 ng / ML, faire la série de dilutions de rapport de multiplication (Remarque: ne pas faire la dilution de rapport de multiplication directement dans la plaque), après dilution séparément à 100 ng/ml，50 ng/ml，25 ng/ml，12.5 ng/ml，6.25 ng/ml，3.12 ng/ml，1.56 ng/ml， La dilution de l'échantillon est formulée directement sous forme de concentration standard de 0 ng / ML dans les 15 premières minutes d'utilisation provisoire.
Si vous formulez 50 ng / ml d'étalon: Prenez 0,5 ml (pas moins de 0,5 ML) de 100 ng / ml de l'étalon ci - dessus et ajoutez - le dans un tube Eppendorf contenant 0,5 ml de dilution de l'échantillon, mélangez, le reste de la concentration et ainsi de suite.
3. Dilution de l'échantillon: 1 × 20 ml / flacon.
4. Dilution de détection a: 1 × 10 ml / flacon.
5. Dilution de détection B: 1 × 10 ml / flacon.
6. Solution de détection a: 1 × 120 UL / flacon (1: 100) avant utilisation pour la dilution de détection a 1: 100 dilution, avant dilution formulé selon la quantité totale pré - calculée nécessaire pour chaque expérience (100 UL / puits), la formulation réelle doit être formulée 0,1 - 0,2 ml de plus. Comme 10 UL de solution de détection a plus 990 UL de dilution de détection a, mélanger doucement et formuler dans l'heure précédant l'utilisation.
7. Solution de détection B: 1 × 120 µl / flacon (1: 100) avant utilisation pour détecter la dilution b 1: 100 dilution. Méthode de dilution identique à la solution de détection a.
8. Solution de substrat: 1 × 10 ml / bouteille.
9. Liquide de lavage concentré: 1 x 30 ml / bouteille, chaque bouteille est diluée 25 fois avec de l'eau distillée lors de l'utilisation.
10. Liquide de terminaison: 1 x 10 ml / flacon (H2SO4 2n).

Milieu de fermentation du lactose (milieu de fermentation du lactose) 1000 (g)

Gélose désoxycholate (DC) 250 (g)

Gélose désoxycholate (DC) 1000 (g)

Milieu herxhlet 250 (g)

Fluide bactériophilisant Herzi 250 (g)

Gélose hémolytique Base 250 (g)

Gentiane Purple Blood Agar Base 250 (g)

Milieu de culture des souches 250 (g)

Gélose de détection de tétracycline 250 (g)

Milieu Mr - VP 250 (g)

Milieu de culture Tsar 250 (g)

Gélose cristalline violette neutre au sel de bile rouge Vrba 250 (g)

Gélose de sel de bile rouge neutre violet cristallin 1000 (g)

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Cathepsine antibodies, Cath ab Kit ELISA 48T / 96T

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Étapes opérationnelles:

1. Dilution des étalons: Ce kit fournit un étalon primitif, l'utilisateur peut effectuer la dilution dans un petit tube en suivant le diagramme ci - dessous.

2.sampling: Placez des trous vides séparément (les trous de contrôle vides n'ajoutent pas l'échantillon et le réactif de référence d'enzyme, les étapes restantes fonctionnent de la même manière), des trous standard, des trous d'échantillon à tester. Dans le paquet d'étalon d'enzyme est dosé avec précision 50 μl de l'étalon sur la plaque, dans le puits de l'échantillon à tester est d'abord ajouté 40 μl de dilution de l'échantillon, puis 10 μl de l'échantillon à tester (la dilution finale de l'échantillon est de 5 fois). Ajouter l'échantillon au fond du trou de la plaque de marquage enzymatique, essayez de ne pas toucher la paroi du trou, agitez doucement et mélangez.

3. Incubation: incuber à 37 ℃ pendant 30 minutes après avoir scellé la plaque avec un film de plaque.

4. Liquide de dosage: Gardez le liquide de lavage concentré 30X après dilution avec de l'eau distillée 30X.

5. Lavage: Retirez soigneusement le film de la plaque d'étanchéité, jetez le liquide, égouttez, remplissez chaque trou avec le liquide de lavage, laissez reposer 30 secondes après l'égouttage, ainsi répétez 5 fois, battez le sec.

6. Ajouter l'enzyme: ajouter 50 μl de réactif d'étalon d'enzyme par puits, à l'exception des puits vides.

7. Incubation: même opération 3.

8. Lavage: même opération 5.

9. Rendu des couleurs: chaque puits d'abord ajouter l'agent de rendu des couleurs A50 μl, puis l'agent de rendu des couleurs B50 μl, mélanger légèrement sous agitation, 37 ℃ éviter le rendu de la lumière pendant 15 minutes.

10. Terminaison: ajouter 50 μl de liquide de terminaison par puits pour mettre fin à la réaction (à ce stade, le bleu tourne vers le jaune).

11. Détermination: l'Absorbance (valeur OD) de chaque trou est mesurée dans l'ordre séquentiel avec un climatiseur vide zéro, longueur d'onde de 450 nm. Le dosage doit être effectué dans les 15 minutes suivant l'addition du liquide de terminaison.